Advances of Heterogeneity of EGFR in Non-small Cell Lung Cancer

Taniguchi等[9]对21例具有EGFR突变、术后复发后仅接受了吉非替尼治疗的NSCLC患者标本进行分析，利用显微切割技术，对每一例肿瘤标本选取50个-60个瘤灶进行EGFR基因突变检测。21例患者中15例全部由EGFR突变细胞组成，但其它6例由部分突变和部分未突变的细胞组成，其中17例靶向治疗有效（81%）。6例由部分突变和部分未突变的细胞组成的患者的无疾病进展生存期（progression free survival, PFS）和总生存期（overall survival, OS）均明显少于全部突变者（P=0.009, P=0.003），表明肿瘤组织内EGFR突变的异质性是影响靶向治疗疗效的重要因素。

Tomonaga等[10]最近报道了混合型肺腺癌肿瘤组织内的异质性研究。该项研究测定了38例混合型肺腺癌，每例纤维微切割的样本均由病理学家将其分为乳头状型、腺泡型和肺泡细胞型等亚型。结果在9例组织中检测到肿瘤内EGFR异质性，而且EGFR突变更常见于肺泡细胞型，但无统计学差异；EGFR突变肿瘤内异质性与吸烟史有关（P<0.043）。结果提示在腺癌中EGFR的异质性可能与不同类型的细胞组成有关系。

上述研究提示肿瘤组织内部普遍存在EGFR异质性，而且这种异质性会影响TKI治疗的疗效。

2 同一患者原发灶与转移灶EGFR基因异质性

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研究证实原发灶与转移灶之间也存在EGFR基因异质性。Gow等[11]分析了67例从未接受过TKI的NSCLC配对原发灶和转移灶的EGFR外显子18-21的检测结果。转移灶包括脑、骨、胸膜、皮肤、软组织、淋巴结、消化系统、肺、肾上腺等。用直接测序法，18例具有原发灶EGFR突变的患者中9例转移灶丢失突变，26例转移灶中存在突变的患者中17例原发灶是阴性的。用扩增阻滞突变系统法（scorpion amplified refractory mutation system, SARMS）也测定了上述标本。结合两种方法原发灶和转移灶的不一致率为27%（18/67），提示原发灶与远处转移灶之间存在EGFR基因异质性。

Schmid等[12]用直接双向测序法测定96例配对的肺腺癌原发灶和局部淋巴结转移灶中EGFR基因外显子18-21突变状态。7例发现EGFR基因突变，其中1例原发灶和淋巴结转移灶中的EGFR突变是一致的。3例是原发灶有突变而转移灶没有，另3例是原发灶没有而转移灶有，不一致率为6.25%（6/96），结果提示在原发灶与局部转移淋巴结之间也存在EGFR基因异质性。

原发灶与转移灶的异质性也是影响TKI疗效的因素。Sun等[13]用直接测序法测定80例NSCLC患者的原发灶和区域转移淋巴结中EGFR基因突变。160例标本中21例原发灶和26例转移灶显示EGFR突变。EGFR突变在原发灶和转移灶的不一致率为8.75%（7/80）。结果提示在中国有相当比例的NSCLC患者显示EGFR基因突变在原发灶和转移灶中不一致。其中，5例纵隔淋巴结具有EGFR敏感突变的患者接受了吉非替尼新辅助化疗，3例为外显子19缺失突变，2例为外显子21错义突变，结果显示4例对吉非替尼治疗有效，1例显示进展。有效的4例中原发灶和转移灶均缩小，追溯原发灶的EGFR突变时发现，4例均具有EGFR敏感突变，进展的1例显示原发灶增大和出现胸腔积液，进一步取原发灶进行基因检测发现原发灶的EGFR为野生型，提示原发灶和转移灶的EGFR基因异质性是影响TKI疗效的重要因素。

还有很多其它的研究结果（表1），不同实验室原发灶与转移灶的EGFR基因突变不一致率存在一定的差异，可能与患者入选标准不同以及检测方法不同有关，但是均提示NSCLC中EGFR基因在原发灶和转移灶中确实存在不同程度的异质性。

3 肿瘤组织与血液的EGFR基因异质性

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肿瘤组织与血液的DNA EGFR基因突变状态也存在差异。Bai等[25]利用高压液相色谱法（denaturing highperformance liquid chromatography, DHPLC）分析了230例IIIb期和IV期NSCLC患者血浆DNA样本和对应肿瘤组织的EGFR基因外显子19和21突变。230例标本中79例血浆EGFR突变，77例肿瘤组织中EGFR突变，16例血浆DNA突变的患者没有对应原发灶的突变，14例肿瘤组织EGFR突变的患者血浆DNA未检测到突变，不一致率为13.0%（30/230）。其中102例患者接受了吉非替尼治疗，在37例具有血浆EGFR突变的患者中22例（59.5%）治疗有效，而在65例没有血浆EGFR突变的患者中仅15例（23.1%）治疗有效（P=0.002），而且血浆EGFR突变阳性的患者PFS明显长于没有突变的患者（P=0.044）。血浆或组织EGFR突变阳性为独立的预后因素（P=0.001），说明只要血浆和组织中其一有EGFR突变从TKI治疗中获益的可能性就大。

与Bai等[25]的研究结果相似，Brevet等[26]结合了质谱基因分型检测（mass spectrometry genotyping assay, Sequenom）和突变富集PCR（mutant-enriched PCR, ME-PCR）方法检测血浆DNA中EGFR突变，将31例血浆中DNA的EGFR突变结果与肿瘤组织DNA进行比较。血浆DNA的EGFR突变与原发灶的不一致率为39%（12/31）。厄洛替尼治疗的患者总生存与血浆或肿瘤组织EGFR突变密切相关（P=0.002），2例只在血浆DNA中有阳性突变的患者也显示很好的疗效和预后。血浆DNA中EGFR突变对TKI治疗的疗效具有预测价值。

Zhao等[27]比较了93例肺癌组织和配对血浆样本的EGFR突变状态。其中3例组织和1例血浆在巢式PCR时未获得目标片段。89例配对血浆和组织的EGFR突变一致率为80.9%（72/89）。女性、非鳞癌、晚期患者突变符合率较高，在这些人群中血浆可代替组织标本进行检测。进一步检测证实对鳞癌、早期患者检测血浆基因突变不是一个明智的选择。

Yung等[28]测定了35例NSCLC患者靶向治疗前血浆EGFR基因突变，具有外显子19缺失和L858R突变的分别有6例（17%）和9例（26%）。与肿瘤样本的测序结果相比较，血浆EGFR突变的敏感性和特异性分别为92%和100%。研究发现血浆突变序列的浓度与临床缓解密切相关，在部分缓解或完全缓解的患者中可见到浓度降低，然而在肿瘤进展的患者中可观察到突变持续存在。1例患者在TKI起效后停药，EGFR突变在停药后4周再次出现。

上述研究结果提示，血浆和组织的EGFR基因突变存在异质性，也具有很大比例的一致性，因此血浆EGFR突变状态一定程度上可预测组织的EGFR突变状态，而且无论血浆或是组织，只要其一具有突变从TKI治疗中获益的可能性就大。

4 化疗前后EGFR基因的异质性

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这方面的研究较少，以下两项研究结果提示无论是组织中还是血液中EGFR基因突变状态均会在化疗后发生一定程度的改变。卓明磊等[29]在2010年CSCO会议上报道新辅助化疗前后NSCLC肿瘤组织EGFR突变状态的变化。取46例化疗前后肿瘤组织标本进行微切割后提取DNA，采用DHPLC法检测EGFR突变状态。全组患者化疗前EGFR突变率为43.5%（20/46），化疗后比例降为37%（17/46）。35例患者化疗前后EGFR基因型保持不变（22例保持野生型，13例保持突变型），4例由野生型转为突变，7例由突变型转为野生。本组患者34例（78.9%）达到化疗有效，而12例（21.1%）为疾病稳定。多因素分析结果显示化疗方案、周期数、性别、吸烟和病理类型等因素与EGFR基因型转换无明显相关。

Wang等[30]研究化疗前后血浆EGFR突变状态的变化。共有253例患者入组，其中包括203例进展期NSCLC和50例IIIa期NSCLC。血浆样本来源于化疗前（一线治疗前）和化疗后（2个周期化疗后）。EGFR的突变用高压液相色谱法测定。203例患者中化疗前的血浆有36.5%（74/203）和化疗后29.6%（60/203）的EGFR突变。其中117例在化疗前后保持了原本的EGFR基因状态（包括93例野生型和24例突变型），36例由阴性转为阳性，50例由阳性转为阴性。同样的趋势在新辅助化疗中也发现，新辅助化疗前突变率为44%（22/50），新辅助化疗后为36%（18/50），突变率有所下降。以上研究结果提示对于化疗失败拟采用靶向治疗的患者，最好采用即时标本进行EGFR突变检测。

综上所述，NSCLC中EGFR基因突变存在异质性，不同时间、不同标本、甚至同一标本内都存在EGFR基因突变的异质性，这是导致TKI治疗疗效存在差异的原因之一，也提示临床上最好采用即时多点标本的EGFR基因检测结果来指导TKI治疗。

参考文献

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